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间接血凝试验
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[[间接血凝试验]](IHA)是将[[抗原]](或[[抗体]])包被于红[[细胞表面]],成为[[致敏]]的载体,然后与相应的抗体(或抗原)结合,从而使[[红细胞]]拉聚在一起,出现可见的[[凝集反应]]。 ==操作过程== 该技术在临床检验中应用广泛,以下简述其操作过程。 ===1.载体=== 红细胞是大小均一的载体颗粒,最常用的为绵羊、家兔、鸡的红细胞及O凝型人红细胞。新鲜红细胞能吸附[[多糖类]]抗原,但[[吸附蛋白]]质抗原或抗体的能力较差。致敏的新鲜红细胞保存时间短,且易变脆、[[溶血]]和污染,只能使用2~3d。为此一般在致敏前先将红细胞醛化,可长期保存而不溶血。常用的醛类有[[甲醛]]、[[戊二醛]]、[[丙酮]]醛等。红细胞经醛化后体积略有增大,两面突起呈圆盘状。醛化红细胞具有较强的吸附蛋白质抗原或抗体的能力,[[血凝]]反应的效果基本上与新鲜红细胞相似。如用两种不同醛类处理效果更佳。也可先用戊二醛,再用[[鞣酸]]处理。醛化红细胞能耐60C的加热,并可反复冻融不破碎,在4℃环境中可保存3-6个月,在一20℃的环境中可保存1年以上。 ===2.致敏=== 致敏用的抗原或抗体要求纯度高,并保持良好的[[免疫活性]]。用[[蛋白质]]致敏红在低pH,低离子浓度下,用醛化红细胞直接吸附即可。间接法则需用耦联剂将蛋白质结合到红细胞上。常用耦联剂为双耦氮[[联苯胺]](bis-diazotized benzidine,BDB)和[[氯化铬]]。前者通过[[共价键]],后者通过金属阳离子静电作用使蛋白质与红细胞表面结合而达到致敏的目 ===3.[[血凝试验]]=== 可在[[微量滴定]]板或[[试管]]中进行,将[[标本]]倍比稀释,一般为1:64,同时设不含标本的[[稀释液]]对照孔。在含稀释标本1滴的板孔(或试管)中,加入0.5%致敏红细胞悬液1滴,充分混匀,置室温1~2h,即可观察结果。凡红细胞沉积于孔底,集中呈1圆点的为不[[凝集]](一)。如[[红细胞凝集]],则分布于孔底周围。根据红细胞凝集的程度判断阳性反应的强弱,以抖凝集的孔为[[滴度]]终点。 [[分类:免疫医学]]
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间接血凝试验
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